, Extracción e identificación pigmentos vegetales.
Actividad 1.- Colocar el vaso con el extracto de pigmentos frente a una luz (ej. flexo).
Anotar el color de la solución. Colocar el vaso de forma que la luz y nuestra vista no estén
en línea recta. Observar la coloración. ¿Hay cambios? La propiedad de un compuesto de
absorber luz reflejada y refractada de forma diversa recibe el nombre de DICROÍSMO.
El color de la coloración es verde. Con la luz se ve un color verde claro.
Actividad 2.- Una vez seco el papel anotar las bandas presentes, su posición y
características. ¿Son todas iguales? ¿Podrías identificarlas según la información
aportada en el guion? Aunque las condiciones de la cromatografía no son las óptimas
(ambiente saturado, separación total, ...) se separan diferentes pigmentos presentes en el
extracto y por consiguiente en el material vegetal de partida. Pegar el papel cromatográfico
al cuaderno de prácticas.
No todas son iguales. La banda presenta distintos colores. Los verdes son debidos a los
cloroplastos. Y el amarillo se debe al almidón.
Actividad 3.- Identificar las fases (bandas de distintas características) de los tubos "1" y
"2". Anota sus características e identifica las polares o hidrófilas y las apolares o lipófilas
(o hidrófobas).
Tubo 1: el éter rompe la parte apolar de la xantofila. La parte polar se ira con el agua y se formara
una banda ancha amarilla al fondo. En la parte superior, la banda verde,
Tubo 2: el NaOH. Se rompe la parte apolar de la clorofila que es soluble en agua y por ello es
verde el fondo. La parte superior es apolar, amarillo
, Extracción e identificación de almidón en vegetales
Actividad 1. Observar cambios de color. Añadir 3 ml de agua destilada y luego otros 3 ml
y observar los cambios. Anotar los resultados.
Como contiene lugol la patata se tiñe de negro. Las machas amarillas que aparecen se debe a
la oxidación. El amarillo significa que está sucio.
Actividad 2. Observar al microscopio a varios aumentos. Describir y dibujar las
estructuras presentes.
Encontramos amiloplastos desnaturalizados. son reservas de almidón. Son las gotas negras.
Actividad 3. Describir los cambios en la preparación. Analizar el contenido de los gránulos
que se observan y su estructura, relacionando este resultado con el test del tubo de
ensayo y el lugol.
Al teñir el almidón las partes más externas absorben rápidamente el lugol. La parte interna tarda
más en teñirse. Por tanto, la zona externa presenta gránulos negros visibles mientras que la zona
interna es menos perceptible.
Extracción e identificación de proteínas en moluscos de peces.
Actividad 1. Observar la preparación, Anotar y dibujar las observaciones. ¿Se distinguen
patrones de tinción? ¿Hay diferencias entre los tejidos tratados con las distintas
soluciones extrayentes?
Tubo 1: con agua el morado no se desnaturaliza casi nada
Tubo 2: con el SDS se tiñe de color lila
Tubo 3: con sal se tiñe de azul – a trozos
Actividad 1.- Colocar el vaso con el extracto de pigmentos frente a una luz (ej. flexo).
Anotar el color de la solución. Colocar el vaso de forma que la luz y nuestra vista no estén
en línea recta. Observar la coloración. ¿Hay cambios? La propiedad de un compuesto de
absorber luz reflejada y refractada de forma diversa recibe el nombre de DICROÍSMO.
El color de la coloración es verde. Con la luz se ve un color verde claro.
Actividad 2.- Una vez seco el papel anotar las bandas presentes, su posición y
características. ¿Son todas iguales? ¿Podrías identificarlas según la información
aportada en el guion? Aunque las condiciones de la cromatografía no son las óptimas
(ambiente saturado, separación total, ...) se separan diferentes pigmentos presentes en el
extracto y por consiguiente en el material vegetal de partida. Pegar el papel cromatográfico
al cuaderno de prácticas.
No todas son iguales. La banda presenta distintos colores. Los verdes son debidos a los
cloroplastos. Y el amarillo se debe al almidón.
Actividad 3.- Identificar las fases (bandas de distintas características) de los tubos "1" y
"2". Anota sus características e identifica las polares o hidrófilas y las apolares o lipófilas
(o hidrófobas).
Tubo 1: el éter rompe la parte apolar de la xantofila. La parte polar se ira con el agua y se formara
una banda ancha amarilla al fondo. En la parte superior, la banda verde,
Tubo 2: el NaOH. Se rompe la parte apolar de la clorofila que es soluble en agua y por ello es
verde el fondo. La parte superior es apolar, amarillo
, Extracción e identificación de almidón en vegetales
Actividad 1. Observar cambios de color. Añadir 3 ml de agua destilada y luego otros 3 ml
y observar los cambios. Anotar los resultados.
Como contiene lugol la patata se tiñe de negro. Las machas amarillas que aparecen se debe a
la oxidación. El amarillo significa que está sucio.
Actividad 2. Observar al microscopio a varios aumentos. Describir y dibujar las
estructuras presentes.
Encontramos amiloplastos desnaturalizados. son reservas de almidón. Son las gotas negras.
Actividad 3. Describir los cambios en la preparación. Analizar el contenido de los gránulos
que se observan y su estructura, relacionando este resultado con el test del tubo de
ensayo y el lugol.
Al teñir el almidón las partes más externas absorben rápidamente el lugol. La parte interna tarda
más en teñirse. Por tanto, la zona externa presenta gránulos negros visibles mientras que la zona
interna es menos perceptible.
Extracción e identificación de proteínas en moluscos de peces.
Actividad 1. Observar la preparación, Anotar y dibujar las observaciones. ¿Se distinguen
patrones de tinción? ¿Hay diferencias entre los tejidos tratados con las distintas
soluciones extrayentes?
Tubo 1: con agua el morado no se desnaturaliza casi nada
Tubo 2: con el SDS se tiñe de color lila
Tubo 3: con sal se tiñe de azul – a trozos
